
細胞培養室搬遷 無菌 + 細胞活性保障精簡要點
核心:分階無菌管控、恒溫穩運、新室預標、全程無暴露,全流程阻斷污染,減少細胞應激損傷。
一、搬遷前:雙室籌備,細胞預處理
新室:完成潔凈 / 溫濕度 / 壓差調試并連續運行 72h,臭氧 + 酒精消毒,空白培養基驗證無菌;提前校準培養箱、超凈臺等設備,接通無菌水 / CO?并調試。
舊室:細胞選對數生長期處理,貼壁 / 懸浮細胞均制高濃度懸液,加凍存液梯度凍存(珍貴株留舊室液氮備份);無菌耗材雙層密封、非無菌設備外表面消毒,液氮罐補滿液。
二、搬遷中:全程無菌轉運,精準控溫
細胞轉運:凍存細胞用 - 80℃干冰 / 程控低溫箱,活細胞(僅短途)用 37℃恒溫箱,全程密封、防震蕩,不隨意開蓋;
設備 / 耗材:無菌與非無菌分開運,所有物品進新室前,在緩沖間做 75% 酒精表面消毒,拆外層包裝后移入;
人員動線:專業人員穿無菌連體服,走舊室無菌口→專用通道→新室無菌口單向動線,不交叉、不折返。
三、搬遷后:新室復校,無菌復蘇復培
設備歸位:外表面二次消毒,超凈臺紫外 + 送風、培養箱校準 CO?/ 溫濕度后,均用空白培養基驗證無菌;無菌耗材移入超凈臺,冷藏試劑立即歸位;
細胞復蘇:凍存管 37℃水浴 1-2min 快速融解,超凈臺內稀釋 DMSO、離心重懸后接種,24h 觀察、48h 換液;活細胞立即入培養箱靜置 2-4h,換新鮮培養基復培;
環境監控:連續 7 天監測新室沉降菌 / 浮游菌,每日記錄設備參數,超凈臺 / 培養箱定期無菌檢測。
四、核心防護細節
不同細胞株分開凍存、轉運、復蘇,標注清晰不混用,杜絕交叉污染;
細胞全程避溫度驟變,凍存≥-80℃、活細胞 37℃±1℃,復蘇融解必須快速;
所有操作均在超凈臺完成,耗材 / 培養基確保無菌,設備全程精準標定;
新室執行嚴格無菌管理,非培養人員禁止入內,定期臭氧消毒。
五、簡易應急
溫度異常:凍存細胞回升至 - 60℃以上就近入液氮,活細胞偏離溫度超 2h 立即換液加保護劑;
密封破損:重新消毒封裝,廢棄疑似污染耗材;
活性偏低:換新鮮培養基,適當調整 CO?濃度,加生長因子;
雜菌污染:立即隔離污染細胞,消毒相關設備,更換所有耗材 / 培養基。
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